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- T/CVMA 13-2018H7N9亚型禽流感病毒双重实时荧光RT-PCR检测方法
标准号:
T/CVMA 13-2018
标准名称:
H7N9亚型禽流感病毒双重实时荧光RT-PCR检测方法
标准类别:
团体标准(TZ)
英文名称:
Duplex real-time RT-PCR assay for detection of avian influenza A (H7N9) virus-
发布日期:
2018-10-24 -
实施日期:
2018-10-24 出版语种:
简体中文下载格式:
.zip.pdf下载大小:
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标准简介:
本标准适用于各级动物疫病预防与控制中心实验室、动物疫病第三方检测机构、动物疫病诊断试剂生产研发企业、兽医相关高校和研究所等机构利用实时荧光RT-PCR方法对H7N9亚型禽流感病毒的检测,以及禽流感病毒HA基因和/或NA基因的检测
部分标准内容:
ICS 11.220
B 41
团 体 标 准
T/CVMA 13—2018
H7N9亚型禽流感病毒双重实时荧光RT-PCR检测方法
Duplex real-time RT-PCR assay for detection of avian influenza A (H7N9) virus
2018-10-24 发布 2018-10-24 实施
中国兽医协会 发布
前言
本标准按GB/T 1.1—2009给出的规则起草。
本标准由中国兽医协会提出并归口。
本标准起草单位:中国动物疫病预防控制中心。
本标准主要起草人:刘玉良、王传彬、宋晓晖、吴佳俊、杨林、孙明、陈西钊、乔明明、蒋菲、顾小雪、刘洋、张硕、韩焘、赵柏林。
1 范围
本标准规定了H7N9亚型禽流感病毒双重实时荧光RT-PCR检测试剂、仪器设备、实验操作步骤。
本标准适用于禽组织、分泌物、排泄物和培养物中H7N9亚型禽流感病毒检测。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范
3 试剂
3.1 RNA提取试剂
RNA提取试剂详见附录A.1~A.4,或选取商品化的病毒RNA提取试剂盒。
3.2 5×RT-PCR缓冲液
Tris base: 15.14g
KCl: 13.98g
MgCl2·6H2O: 1.53g
DTT: 3.86g
加无核酸酶灭菌蒸馏水至400mL,调pH值至8.3(室温下),定容至500mL。过滤(0.22μm)除菌后置于2℃~8℃保存备用。
3.3 10×PCR缓冲液的配制
Tris base: 6.06g
KCl: 18.64g
Triton X-100: 5.00mL
加无核酸酶灭菌蒸馏水至400mL,用HCl调pH值至9.0(室温下),定容至500mL。高压灭菌冷却后置于2℃~8℃保存备用。
3.4 引物和探针
表1 所用引物和探针
名称 | 序列(5'-3')
--------------|----------------------------------
HA-7-F | TGGTTTAGCTTCGGGGCRTCAT
HA-7-R | ACAATAGTGCACYGCATGTTTCC
HA-7-P | FAM-CCATTGYAATGGGYCT-MGB
NA-9-F | ACACTCAAACGGAACAATACACG
NA-9-R | GACCACCCAATGCATTCCAC
NA-9-P | HEX-AAGCTGGCCACTATC-MGB
注1:将表中引物和探针均用无核酸酶灭菌蒸馏水稀释至10μmol/μL后使用。
注2:引物序列中,R代表A或G碱基;Y代表C或T碱基。
3.5 其他试剂
Taq DNA聚合酶(5U/μL)、AMV反转录酶(10U/μL)、RNA酶抑制剂(40U/μL)、无水乙醇、无核酸酶灭菌蒸馏水、生理盐水。
4 仪器设备
分析天平、高速离心机、荧光PCR仪、组织研磨仪、-20℃冰箱、可调移液器。
5 操作步骤
5.1 样品采集
样品采集按照NY/T 541进行。对于病死禽,取脑、肺、气管、喉头等组织;对于活禽,用棉拭子轻轻分别采集同一只禽的咽喉分泌物和少量泄殖腔粪便,放在含有保护液(50%甘油生理盐水)的同一离心管中,加盖,编号。
5.2 样品处理
5.2.1 组织样品
每份组织分别从三个不同的位置称取样品约1g,剪碎后取适量于研磨器中研磨,加入1.0mL生理盐水继续研磨,待匀浆后转至灭菌离心管中,10,000×g离心2min,取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中。
5.2.2 分泌物和排泄物样品
将咽喉/泄殖腔棉拭子在振荡器上充分混合,振荡、挤压干后弃去拭子。10,000×g离心5min,吸取上清100μL于1.5mL灭菌离心管中。
5.2.3 培养物样品
将培养物10,000×g离心5min,取上清100μL于1.5mL灭菌离心管中。
5.3 病毒RNA的提取
5.3.1 若选用附录A中所列试剂提取病毒RNA,则参照以下步骤进行操作:
a) 取已处理的样品、阴性对照和阳性对照,分别加入裂解液600μL,充分颠倒混匀,室温静置3min~5min;
b) 将液体吸入吸附柱中,10,000×g离心30s;
c) 弃去收集管中液体,加入600μL洗涤液,10,000×g离心30s;
d) 重复上述步骤c)进行洗涤;
e) 弃去收集管中液体,10,000×g离心2min,以除去残留的洗涤液;
f) 将吸附柱移入新的1.5mL无菌离心管中,向柱中央加入洗脱液50μL,室温静置1min,10,000×g离心30s,离心管中液体为模板RNA。
5.3.2 若使用病毒RNA试剂盒提取病毒RNA,则按试剂盒说明书进行操作。
5.4 双重实时荧光RT-PCR扩增
按照表2配制双重实时荧光RT-PCR扩增反应体系。
表2 双重实时荧光RT-PCR扩增反应体系
项目 | 体积 (μL)
----------------------|------------
HA-7-F | 0.80
HA-7-R | 0.80
HA-7-P | 0.80
NA-9-F | 0.80
NA-9-R | 0.80
NA-9-P | 0.80
无核酸酶灭菌蒸馏水 | 3.60
5×RT-PCR缓冲液 | 4.00
10×PCR缓冲液 | 2.00
AMV反转录酶 | 0.25
RNA酶抑制剂 | 0.15
Taq DNA聚合酶 | 0.20
RNA模板 | 5.00
总体积 | 20.00
注:如仅需扩增HA或NA基因,则选择表中扩增该基因的相应引物和探针以及PCR反应溶液配制反应体系,同时增加无核酸酶灭菌蒸馏水至6.00μL。
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