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标准号:
T/CVMA 8-2018
标准名称:
动物A型流感病毒微滴式数字RT-PCR检测方法
标准类别:
团体标准(TZ)
英文名称:
Method of droplet digital RT-PCR for detection of influenza A virus-
发布日期:
2018-10-24 -
实施日期:
2018-10-24 出版语种:
简体中文下载格式:
.zip.pdf下载大小:
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标准简介:
本标准适用于各级动物疫病预防与控制中心动物疫病检测实验室、动物疫病第三方检测机构、动物疫病诊断试剂生产研发企业及兽医相关高校研究所等机构利用微滴式数字RT-PCR检测方法对动物A型流感病毒核酸的检测
部分标准内容:
ICS 11.220
B 41
团体标准
T/CVMA 8—2018
动物A型流感病毒微滴式数字RT-PCR检测方法
Method of droplet digital RT-PCR for detection of influenza A virus
2018-10-24发布 2018-10-24实施
中国兽医协会 发布
前言
本标准按GB/T 1.1—2009给出的规则起草。
本标准由中国兽医协会提出并归口。
本标准起草单位:中国动物疫病预防控制中心、上海市动物疫病预防控制中心。
本标准主要起草人:刘玉良、王传彬、杨林、周锦萍、宋晓晖、辛盛鹏、原霖、翰厚斌、董浩、顾小雪、杨德全、徐琦、亢文华、汪葆玥、马英、王晓英、陈亚娜。
1 范围
本标准规定了动物A型流感病毒(Influenza A Virus)微滴式数字RT-PCR检测方法的试剂与耗材、仪器与设备、操作步骤、结果分析。
本标准适用于动物A型流感病毒核酸的检测。
2 规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范
3 原理
微滴式数字PCR(Droplet Digital PCR,ddPCR)的技术原理是利用微滴化技术将一份反应体系分成数万个纳升级的微滴进行定量PCR检测,本质上是将传统定量PCR的一次检测变成数万次检测,提高了检测的灵敏度和精准度。微滴发生器可以将每一份扩增体系分成数万个均匀的纳升级微滴,每个微滴不含或者含有一个至数个待检核酸靶分子。每个微滴都将作为一个独立的PCR扩增体系,在PCR扩增仪上进行终点PCR扩增。利用微滴分析仪逐个对每个微滴进行检测,有荧光信号的微滴判读为1,没有荧光信号的微滴判读为0。然后根据泊松分布原理以及阳性微滴的比例,计算出待检靶分子的浓度或拷贝数。
4 试剂与耗材
4.1 提取试剂
宜选取商品化的病毒RNA提取试剂盒。
4.2 微滴式数字RT-PCR扩增试剂
宜按照不同的微滴式数字PCR平台的说明书选取推荐的微滴式数字RT-PCR扩增试剂。
4.3 引物和探针
AIV上游引物(Flu-A-F):5'-AGATGAKTCTTCTAACCGAGGTCG-3'
AIV下游引物(Flu-A-R):5'-TGCAAAGACATCTTCDAGTCTCTG-3'
AIV探针(Flu-A-P):5'-FAM-TCASGCCCCCTCVAAGCCGA-BHQ1-3'
5 仪器与设备
生物安全柜、PCR扩增仪、数字PCR微滴发生器、数字PCR微滴分析仪、纯水仪、核酸定量仪、涡旋震荡仪。
6 操作步骤
6.1 样品采集及运输
按照NY/T 541执行。
6.2 RNA提取
按照所选取的病毒RNA提取试剂盒说明书进行提取。
6.3 微滴式数字RT-PCR扩增方法
每个样品微滴式数字RT-PCR扩增设置3个平行。微滴式数字RT-PCR扩增体系配制如表1。该步骤按照不同微滴式数字PCR平台的说明书进行操作。
表1 微滴式数字RT-PCR扩增体系
试剂 | 终浓度 | 体积
2×酶混合液 | - | 10 μL
Flu-A-F (10 μmol/L) | 0.5 μmol/L | 1 μL
Flu-A-R (10 μmol/L) | 0.5 μmol/L | 1 μL
Flu-A-P (10 μmol/L) | 0.1 μmol/L | 0.2 μL
RNA模板 | - | 2 μL
无核酸酶水 | - | 5.8 μL
总体系 | - | 20 μL
注:使用微滴式数字PCR平台进行实验时,应依据不同微滴式数字PCR平台调整扩增体系的组分和最终体积,表中所列组分的终浓度不变。
反应液配制后,使用微滴发生器对扩增体系进行微滴生成。微滴生成后,进行微滴式数字RT-PCR扩增。荧光分析步骤采用FAM单荧光通道,微滴式数字RT-PCR扩增程序如表2所示。
表2 微滴式数字RT-PCR扩增程序
步骤 | 温度 | 持续时间 | 循环数
1 | 42 ℃ | 60 min | 1
2 | 95 ℃ | 10 min | 1
3 | 95 ℃ | 30 s | 40
4 | 55 ℃ | 1 min | 40
5 | 98 ℃ | 10 min | 1
6 | 4 ℃ | 60 min | -
注:升降温速率设置为2.5 ℃/s。
6.4 微滴式数字RT-PCR反应的对照
在进行微滴式数字RT-PCR实验时,应设置阳性对照、阴性对照与空白对照。以提取的动物A型流感病毒RNA溶液作为阳性对照;以提取的A型流感病毒阴性动物组织悬液核酸作为阴性对照;以无核酸酶水作为空白对照。各对照RT-PCR扩增体系中,除模板外,其余组分和RT-PCR扩增程序同6.3。
7 结果分析
7.1 实验成立条件
微滴式数字RT-PCR扩增结果,有效微滴数不得低于理论微滴数的60%。阴性对照组和空白对照组均未检出阳性微滴,阳性对照有明显阳性微滴,且核酸拷贝数浓度≥10 copies/μL,则实验成立。
7.2 阈值设定
微滴式数字RT-PCR结果中,阴性微滴和阳性微滴明显分开,阈值设在阴性微滴和阳性微滴分开的区域。
7.3 结果判定
样品中检测出阳性微滴,且阳性核酸拷贝数≥10 copies/μL,则判定为阳性。
样品中检测出阳性微滴,阳性核酸拷贝数<10 copies/μL,则需复检。若复检结果仍检测出阳性微滴,则判定为阳性,否则判定为阴性。
样品中未检出阳性微滴,则判定为阴性。
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