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【团体标准】 高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒微滴式数字RT-PCR检测方法

本网站 发布时间: 2026-08-16

基本信息

  • 标准号:

    T/CVMA 6-2018

  • 标准名称:

    高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒微滴式数字RT-PCR检测方法

  • 标准类别:

    团体标准(TZ)

  • 英文名称:

    Method of Droplet Digital RT-PCR for Detection of Highly Pathogenic Porcine Reproductive And Respiratory Syndrome Virus
  • 发布日期:

    2018-10-24
  • 实施日期:

    2018-10-24
  • 出版语种:

    简体中文
  • 下载格式:

    .zip.pdf
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标准分类号

  • 标准ICS号:

    11.220
  • 中标分类号:

    B41

关联标准

出版信息

其他信息

  • 起草人:

    原霖、王传彬、杨林、班付国、宋晓晖、辛盛鹏、闫若潜、董浩、周智、张硕、赵柏林、赵雪丽、刘洋、刘颖昳、曲萍、蒋菲、陈亚娜
  • 起草单位:

    中国动物疫病预防控制中心、河南省动物疫病预防控制中心
  • 归口单位:

    中国兽医协会
  • 提出单位:

    中国兽医协会
  • 发布部门:

    中国兽医协会
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标准简介:

本标准适用于各级动物疫病预防与控制中心动物疫病检测实验室、动物疫病第三方检测机构、动物疫病诊断试剂生产研发企业及兽医相关高校研究所等机构利用微滴式数字RT-PCR检测方法对高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒核酸的检测

标准内容标准内容

部分标准内容:

ICS 11.220 B 41 团体标准 T/CVMA 6—2018 高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒微滴式数字RT-PCR检测方法 Method of Droplet Digital RT-PCR for Detection of Highly Pathogenic Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus 2018-10-24 发布 2018-10-24 实施 中国兽医协会 发布 前言 本标准按 GB/T 1.1-2009 给出的规则起草。 本标准由中国兽医协会提出并归口。 本标准起草单位:中国动物疫病预防控制中心、河南省动物疫病预防控制中心。 本标准主要起草人:原霖、王传彬、杨林、班付国、宋晓晖、辛盛鹏、闫若潜、董浩、周智、张硕、赵柏林、赵雪丽、刘洋、刘颖肤、曲萍、蒋菲、陈亚娜。 1 范围 本标准规定了高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒(Highly Pathogenic Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus,HP-PRRSV)微滴式数字 RT-PCR 检测方法的试剂与耗材、仪器与设备、操作步骤、结果分析。 本标准适用于高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒核酸的检测。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 NY/T 541 兽医诊断样品采集、保存与运输技术规范 3 原理 微滴式数字 PCR(Droplet Digital PCR,ddPCR)的技术原理是利用微滴化技术将一份反应体系分成数万个纳升级的微滴进行定量 PCR 检测,本质上是将传统定量 PCR 的一次检测变成数万次检测,提高了检测的灵敏度和精准度。微滴发生器可以将每一份扩增体系分成数万个均匀的纳升级微滴,每个微滴不含或者含有一个至数个待检核酸靶分子。每个微滴都将作为一个独立的 PCR 扩增体系,在 PCR 扩增仪上进行终点 PCR 扩增。利用微滴分析仪逐个对每个微滴进行检测,有荧光信号的微滴判读为 1,没有荧光信号的微滴判读为 0。然后根据泊松分布原理以及阳性微滴的比例,计算出待检靶分子的浓度或拷贝数。 4 试剂与耗材 4.1 提取试剂 宜选取商品化的病毒 RNA 提取试剂盒。 4.2 微滴式数字 RT-PCR 扩增试剂 宜按照不同的微滴式数字 PCR 平台的说明书选取推荐的微滴式数字 PCR 扩增试剂。 4.3 引物和探针 HP-PRRSV 上游引物(HP-PRRSVF):5'-CCC H A GCTGATGACACCTTTG-3' HP-PRRSV 下游引物(HP-PRRSVR):5'-AATCCAGAGGCTCATVCTGGT-3' HP-PRRSV 探针(HP-PRRSVP):5'-FAM-CGYGTAGAACTGTGACAACAACSCTGA-BHQI-3' 5 仪器与设备 生物安全柜、PCR 扩增仪、数字 PCR 微滴发生器、数字 PCR 微滴分析仪、纯水仪、核酸定量仪、涡旋震荡仪。 6 操作步骤 6.1 样品采集及运输 按照 NY/T 541 执行。 6.2 RNA 提取 按照所选取的病毒 RNA 提取试剂盒说明书进行提取。 6.3 微滴式数字 RT-PCR 扩增方法 每个样品微滴式数字 RT-PCR 扩增体系设置 3 个平行。微滴式数字 RT-PCR 扩增体系配制如表 1。该步骤按照不同微滴式数字 PCR 平台的说明书进行操作。 表 1 微滴式数字 RT-PCR 扩增体系 试剂 | 终浓度 | 体积 2×酶混合液 | - | 10 μL HP-PRRSVF(10μmol/L) | 0.5 μmol/L | 1 μL HP-PRRSVR(10μmol/L) | 0.5 μmol/L | 1 μL HP-PRRSVP(10μmol/L) | 0.1 μmol/L | 0.2 μL RNA 模板 | - | 2 μL 无核酸酶水 | - | 5.8 μL 总体系 | - | 20 μL 注:使用微滴式数字 PCR 平台进行实验时,应该依据不同微滴式数字 PCR 平台说明调整扩增体系的组分和最终体积,表中所列组分的终浓度不变。 微滴式数字 RT-PCR 扩增试剂反应液配制后,使用微滴发生器对扩增体系进行微滴生成。微滴生成后,进行微滴式数字 RT-PCR 扩增。荧光分析步骤采用 FAM 单荧光通道,微滴式数字 RT-PCR 扩增程序如表 2 所示。 表 2 微滴式数字 RT-PCR 扩增程序 步骤 | 温度 | 持续时间 | 循环数 1 | 42℃ | 60 min | 1 2 | 95℃ | 10 min | 1 3 | 95℃ | 30 s | 40 4 | 55℃ | 1 min | 40 5 | 98℃ | 10 min | 1 6 | 4℃ | 60 min | - 注:升降温速率设置为 2.5℃/s。 6.4 微滴式数字 RT-PCR 反应的对照 在进行微滴式数字 RT-PCR 实验时,应设置阳性对照、阴性对照与空白对照。以含有 HP-PRRSV 的 RNA 作为阳性对照;以未感染 HP-PRRSV 猪的组织混样基因组作为阴性对照;以无核酸酶水作为空白对照。各对照 RT-PCR 扩增体系中,除模板外,其余组分和 RT-PCR 扩增程序同 6.3。 7 结果分析 7.1 实验成立条件 微滴式数字 RT-PCR 扩增结果,有效微滴数不得低于理论微滴数的 60%。阴性对照组和空白对照组均未检出阳性微滴,阳性对照有明显阳性微滴,且核酸拷贝数浓度 ≥10 copies/μL,则实验成立。 7.2 阈值设定 微滴式数字 RT-PCR 结果中,阴性微滴和阳性微滴明显分开,阈值设在阴性微滴和阳性微滴分开的区域。 7.3 结果判定 样品中检测出阳性微滴,且阳性核酸拷贝数浓度 ≥10 copies/μL,则判定为阳性;样品中检测出阳性微滴,且阳性核酸拷贝数浓度 <10 copies/μL,则需复检。若复检结果仍检测出阳性微滴,则判定为阳性,否则判定为阴性。样品中未检出阳性微滴,则判定为阴性。

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