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【国家标准(GB)】 食品中葡萄糖的测定方法 酶-比色法和酶-电极法

本网站 发布时间: 2024-08-02 14:47:28
  • GB/T16285-1996
  • 已作废

基本信息

  • 标准号:

    GB/T 16285-1996

  • 标准名称:

    食品中葡萄糖的测定方法 酶-比色法和酶-电极法

  • 标准类别:

    国家标准(GB)

  • 标准状态:

    已作废
  • 发布日期:

    1996-04-01
  • 实施日期:

    1996-01-02
  • 作废日期:

    2009-01-01
  • 出版语种:

    简体中文
  • 下载格式:

    .rar.pdf
  • 下载大小:

    272.07 KB

标准分类号

关联标准

出版信息

  • 出版社:

    中国标准出版社
  • 页数:

    平装16开, 页数:11, 字数:13千字
  • 标准价格:

    10.0 元
  • 出版日期:

    1996-01-02

其他信息

  • 首发日期:

    1996-04-10
  • 复审日期:

    2004-10-14
  • 起草人:

    张宗城、刘宁、冯德荣、孙士青、宋家华、郝羬
  • 起草单位:

    中国农垦北方食品监测中心、山东省科学院生物研究所
  • 归口单位:

    全国食品工业标准化技术委员会
  • 提出单位:

    全国食品工业标准化技术委员会
  • 发布部门:

    国家技术监督局
  • 主管部门:

    国家标准化管理委员会
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标准简介:

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本标准规定了用酶-比色法和酶-电极法测定食品中葡萄糖的方法。本标准适用于各类食品中葡萄糖的测定;亦适用于食品中其他组分转化为葡萄糖的测定。 GB/T 16285-1996 食品中葡萄糖的测定方法 酶-比色法和酶-电极法 GB/T16285-1996

标准内容标准内容

部分标准内容:

GB/T16285-1996
食品中葡萄糖的测定方法,一般采用《国际食糖分析方法统一委员会》规定的“兰-埃农法”(LaneandEynon'smethod)和\姆松-华尔格法\(MunsonandWalker'smethod),即菲林氏溶液氧化还原滴定法。此法虽沿用已久,但测定结果只是近似值。因使用菲林氏溶液滴定葡萄糖(还源糖)时,其他具有还原能力的单糖会干扰测定结果。本标准采用的酶-比色法和酶-电极法是在检索了近20年107篇国外文献的基础上,经过反复实验、验证而制定的。酶-比色法和酶-电极法使用的葡萄糖氧化酶(GOD)具有专-性,只能催化葡葡糖水溶液中的β-D-葡萄糖起反应(被氧化),因此测定结果是真实值。本标的酶比色法为仲裁法酶-电极法为快速法。本标准的附录A、附录B都是标准的附录。本标准由全国食品工业标准化技术委员会提出并旧口。本标准起草单位:中国农垦北方食品监测中心(酶-比色法):山东省科学院生物研究所(酶-电极法)。
本标准经全国食品工业标准化技术委员会秘书处审核。本标准主要超草人:张宗城、刘宁、冯德菜、孙士青、宋家华、郝煜。327
中华人民共和国国家标准
食品中葡萄糖的测定方法
酶比色法和酶电极法
Method for determimnation of glucose in food.--Enzyme-colorimetric method and enzyme-el ectrode method1范围
本标准规定了用酶-比色法和酶-电极法测定食品中葡萄糖的方法。GB/T 16285--1996
本标准适用于各类食品中葡萄糖的测定:亦适用于食品中其他组分转化为萄糖的测定。本标准酶-比色法的最低检出限量为0.01ug(葡翻糖)/ml(试液):酶-电极法的最低检出限量为1.0 mg/100 mL,
2酶-比色法
2.1原理
葡葡糖氧化酶(GOD)在有氧条件下,催化β-D-葡糖(葡葡糖水溶液状态)氧化,生成D-葡萄糖酸内酯和过氧化。受过氧化物酶(POD)催化,过氧化氢与4-氮基安替比林和苯酚生成红色醒亚胺。在波长505nm处测定醒亚胺的吸光度,计算食品中葡糖的含量C.Hi.O.+O. CODC,H:O:+H,O
H,O.+C.H,OH+Ch.H.N.O PODC.H,NO+HO2.2试剂
2.2.1组合试剂盒
1号瓶:内含0.2mol/L磷酸盐缓冲溶液(pH=7.0)100mL,其中4-氨基安替比林为0. 001 54 mol/L,
2号瓶:内含0.022mol/L苯酚溶液100mL3号瓶:内含葡萄糖氧化酶(glucoseoxidase)40oU(活力单位)、过氧化物酶(辣根,peroxidase)1000U(活力单位)。
1、2、3号瓶须在4℃左右保存。2.2.2酶试剂溶液:将1号瓶和2号瓶的物质充分混合均匀,再将3号瓶的物质溶解其中,轻轻播动(勿剧烈摇动),使葡萄糖氧化酶和过氧化物酶完全溶解。此溶液须在4左右保存,有效期1个月。2.2.30.085mol/L亚铁氰化钾溶液:称取3.7g亚铁氰化钾K,Fe(CN)。·3H.O,GB1273,分析纯,溶于100mL重蒸馏水中,摇匀。
2.2.40.25mol/L硫酸锌溶液:称取7.7g硫酸锌(ZnSO,·7H,0,GB666,分析纯),溶于100mL重蒸馏水中,摇匀。
2.2.50.1mol/L.氢氧化钠溶液:称取4g氢氧化钠(GB629,分析纯),溶于1000mL重蒸馏水中,摇匀。
2.2.6葡萄糖标准溶液:称取经100±2℃烘烤2h的葡萄糖(HG3-1094,分析纯)1.0000g,溶于重国家技术监督局1996-04-10批准328
1996-12-01实施
GB/T 162851996
蒸馏水中,定容至100mL,摇匀。将此溶液用重蒸馏水稀释V2.00—-→V100,即为200μg/mL葡萄糖标准溶液。
2.3仪器和设备
实验室常规仪器及下列各项:
2.3.1研钵或粉碎机。
2.3.2分析筛。
2.3.3组织捣碎机。
2.3.4恒温水浴锅。
2.3.5可见光分光光度计。
2.3.6微量移液管:1.00mL,精度0.01mL。2.4试样的制备
2.4.1固体样品
粉末状样品:取有代表性的样品至少200g,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。颗粒状样品:取有代表性的样品至少200g,用粉碎机粉碎,或用研钵研细,通过100目分析筛,置于密闭的玻璃容器内。
新鲜水果、蔬菜等固体样品:取有代表性的可食部分至少200g,用组织捣碎机捣碎,置于密闭的玻璃容器内。
2.4.2糊状样品
取有代表性的样品至少200g,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。2.4.3固液体样品
取有代表性的样品至少200g,用组织捣碎机捣碎,置于密闭的玻璃容器内。2.4.4液体样品
取有代表性的样品至少200mL,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。如样品中含二氧化碳,须用三角瓶取200mL,旋摇至基本无气泡,安装冷凝管,置沸水浴中加热10min,取出冷却至室温。2.5试液的制备免费标准下载网bzxz
2.5.1不含蛋白质的试样:用100mL烧杯称取试样(2.4)1~10g(精确至0.0001g),加少量重蒸馏水,转移到250mL容量瓶中,稀释至刻度。摇匀后用快速滤纸过滤。弃去最初滤液30mL,即为试液。试液中葡萄糖含量大于300μg/mL时,应适当增加定容体积。2.5.2含蛋白质的试样:用100mL烧杯称取试样(2.4)1~10g(精确至0.0001g),加少量重蒸馏水,转移到250mL容量瓶中,加入0.085mol/L亚铁氰化钾溶液(2.2.3)5mL、0.25mol/L.硫酸锌溶液(2.2.4)5ml和0.1mol/L氢氧化钠溶液(2.2.5)10mL,用重蒸馏水定容至刻度。摇匀后用快速滤纸过滤。弃去最初滤液30ml,即为试液。试液中葡萄糖含量大于300μg/mL时,应适当增加定容体积。2.6分析步骤
2.6.1标准曲线的绘制
用微量移液管取0.00,0.20,0.40,0.60,0.801.00mL葡萄糖标准溶液(2.2.6),分别置于10mL比色管中,各加入3ml.酶试剂溶液(2.2.2),摇匀,在36土1C水浴锅中恒温40min。冷却至室温,用重蒸馏水定容至10mL,摇匀。用1cm比色血,以葡萄糖标准溶液含量为0.00的试剂溶液调整分光光度计的零点,在波长505nm处,测定各比色管中溶液的吸光度。以葡萄糖含量为纵坐标,吸光度为横坐标,绘制标准曲线。2.6.2试液吸光度的测定
用微量移液管取0.50~~5.00mL试液(2.5)(依试液中葡萄糖的含量而定),置于10mL比色管中。以下按2.6.1步骤操作,但须用等量试液(2.5)调整分光光度计的零点。329
GB/T16285.---1996
测出试液吸光度后,在标准曲线上查出对应的葡葡糖含量。2.7分析结果的表述
样品中葡药糖的含量以质量百分率表示,按式(1)计算:X
1 000 ×1 000 × 100
X10000
式中,X,一一样品中葡萄糖的含量,质量百分率,%,C标准曲线上查出的试液中葡萄糖含量,ug,m.试样的质量.g
V,-—试液的定容体积,mL,
V--测定时吸取试液的体积,mL。计算结果精确至小数点后第二位。2.8允许差
同-样品的两次测定值之差,不得超过两次测定平均值的5.0%。3酶-电极法
3.1原理
葡萄糖氧化酶(GOD)在有氧条件下催化3-D-葡药糖(葡萄糖水溶液状态)氧化,生成D-葡药糖酸--内酯和过氧化。过氧化氢与过氧化氢型电极接触产生电流。该电流值与βD-葡萄糖的浓度呈线性比例,在酶电极葡葡糖分析仪上直接示葡药糖含量。CH,O +O, CODC.H.O+H,O2
3.2试剂
3.2.1组合试剂盒
理,葡萄糖氧化酶酶膜圈:含葡葡糖氧化酶(GOD)15U活力单位):须在0-4C左右保存,有效期12个月。
b。复合试剂:含磷酸二氢钾、磷酸氢二钠、乙二胺四乙酸二钠、氯化钠、苯甲酸钠、庆大霖素硫酸盐;常温保存,有效期24个月。βD-葡药糖标准溶液:浓度100.0mg/100mL,密封保存,有效期12个月。c.
3.2.2缓冲溶液
将袋复合试剂(3.2.1b)溶解在1000 mL蒸馏水中,摇匀。pH=7.2±0.1。3.3仪器和设备
实验室常规仪器及下列各项:
3.3.1研钵或粉碎机。
3.3.2分析筛。
3.3.3组织捣碎机。
3.3.4酶电极葡葡糖分析仪:直接读数式,测量范围0~100.0mg/100mL(β-D-葡萄糖);测量精度±1.0 mg/100 ml(β-D-葡萄糖)。3.3.5微量进样器:容量50μL,精度1μL330
3.4试样的制备
3.4.1固体样品
GB/T 16285--1996
粉末状样品:取有代表性的样品至少200g,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。颗粒状样品:取有代表性的样品至少200g,用粉碎机粉碎,或用研钵研细,通过100目分析筛,置于密闭的玻璃容器内。
新鲜水果、蔬菜等固体样品:取有代表性的可食部分至少200名,置于密闭的玻璃容器内3.4.2糊状样品
取有代表性的样品至少200g,充分混勾,置于密闭的玻璃容器内。3.4.3固液体样品
取有代表性的样品至少200g,用组织捣碎机捣碎,置于密闭的玻璃容器内。3.4.4液体样品
取有代表性的样品至少200mL,充分混匀,置于密闭的玻璃容器内。如样品中含有二氧化碳,须用三角瓶取200mL,摇至基本无气泡,安装冷凝管,置沸水浴中加热10min,取出冷却至室温。3.5试液的制备
3.5.1固体试样和固液体试样
般固体试样和固液体试样:称取试样(3.4)1~10g(使之定容后葡萄糖含量为1~200mg/mL)于100ml.烧杯内,精确至0.0001g,用蒸馏水移入100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀,放置30min(摇动2~3次)。用快速滤纸或脱脂棉过滤。弃去最初滤液,收集1~2mL滤液于带盖小试管中。水果、蔬菜试样:称取试样(3.4)1~10g于100mL烧杯内(使之定容后葡葡糖含量为1~200mg/mL),精确至0.0001g。加入煮沸的蒸馏水30~50mL和5mL缓冲溶液(3.2.2),继续煮沸3~5min,冷却至室温后用研钵研细或用组织捣碎机捣碎。用蒸馏水移入100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。用快速滤纸或脱脂棉过滤。弃去最初滤液,收集1~2mL滤液于带盖小试管中。食用葡萄糖试样:称取试样(3.4)1~10g于100mL烧杯内,精确至0.0001g。加入约50mL蒸馏水,溶解后煮沸2min。冷却后用蒸馏水移入1000mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。3.5.2糊状和液体试样
称取试样(3.4)1~10g(使定容后葡萄糖含量为1~200mg/mL)于100mL烧杯内,精确至0.0001g。用蒸馏水移入100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。用快速滤纸或脱脂棉过滤(如溶液呈透明状,可免除过滤)。弃去最初滤液,收集1~2ml.滤液于带盖小试管中。3.6分析步骤
3.6.1校正仪器
从组合试剂盒中取出电极,将其表面清理干净,吸取缓冲溶液(3.2.2)滴在电极表面。用小镊子取一片酶膜圈,安装在电极表面,使酶膜圈中心和电极中心的白金完全贴紧,形成无气泡的薄层液体,然后将电极安装在反应池内。
仪器开机后,缓冲溶液即自动进入反应池,并自行冲洗。当仪器出现进样指令后,用微量进样器准确吸取25μL标准溶液(3.2.1c),用滤纸擦净针尖外部,将标准溶液注入进样口内。20~40s后仪器自动显示标准溶液的指示值。再等30~60s,仪器自行完成冲洗过程,即可重复注入标准溶液(3.2.1c)数次,直至仪器显示允许开始测定样品。当连续两次标准溶液显示值的相对误差小于2.0%时,即完成校正步骤。
3.6.2测定样品
用试液(3.5)冲洗微量进样器,至少两次。准确吸取25αL试液(3.5),用滤纸擦干针尖外部,注入进样口。20~40s后读取显示值。
3.7分析结果的表述
样品中葡葡糖的含量以质量白分率表示,按式(2)计算:331
GB/T 16285--1996
1000×ml×100
式中:X样品中葡萄糖的合含量,质量百分率,%R-仪器测定值,mg/100mL
V试液的定容体积,mL,
试样的质量,g。
计算结果精确至小数点后第1位。3.8允许差
同一样品的两次测定值之差:
1000×m
样品中葡萄糖盒量小于1.0%时,不得超过两次测定平均值的5.0%中★中的( 2)
样品中葡萄糖含量大于或等于1.0%时,不得超过两次测定平均值的2.0%。332
A1技术要求
A1.1酶活力 
GB/T 16285--1996
附录A
(标准的附录)
葡药糖氧化酶、过氧化物酶的技术要求、试验方法及判定规则葡萄糖氧化酶酶活力(U/mg):≥20;过氧化物酶酶活力(U/mg):≥50。A1.2干扰酶
葡萄糖氧化酶、过氧化物酶中都不得含有纤维素酶、淀粉葡萄糖苷酶、β-果糖苷酶、半乳糖苷酶和过氧化氢酶。
A2试验方法
用移液管吸取0.50mL葡糖标准溶液(2.2.6)置于10mL比色管中,加入100μg可溶性淀粉(HGB3095,分析纯)、100μg纤维二糖(生化试剂)、100ug乳糖(HG3-1000,分析纯)和100μg蔗糖HG3-1001,分析纯),再加入3mL试剂溶液(2.2.2)。以下按2.6.1步骤操作。测定吸光度后,在标准曲线(按2.6.1)上查出对应的葡萄糖含量,按式(A1)计算葡萄糖的回收率:F
式中:F—葡萄糖的回收率,%;C—葡萄糖的实测值,μg。
A3判定规则
0. 5×200×100
(Al)
测得葡萄糖的回收率,如在95%~105%范围内,则判定葡萄糖氧化酶和过氧化物酶符合要求。附录B
(标准的附录)
葡萄糖氧化酶酶膜围性能判定方法B1 酶膜活性的判定
校正仪器时,注入25μL标准溶液(3.2.1c),仪器显示标准溶液的指示值后,按下酶膜响应键,则显示出酶膜活性相对值。如相对值大于10.0,则表示酶膜活性符合要求;相对值小于10.0时.应更换新酶膜。
B2酶膜线性的判定
校正仪器操作步骤完成后,仪器显示酶膜线性检查指令。用微量进样器注入50μL标准溶液(3.2.1c),如显示值大于184.0,表示酶膜线性良好;小于184.0时,应按下仪器线性校正键,进行线性333
校正,或更换新酶膜。
B3酶膜抗干扰性的判定
GB/T16285—1996
校正仪器操作步骤完成后,用微量进样器吸取25L新配制的1%亚铁氰化钾溶液,注入反应池进样口。当仪器显示值为-2.0~十6.0时,表示酶膜抗干扰符合要求;否则应更换新酶膜。1%亚铁化钾溶液的配制:用100mL烧杯准确称取1.15g亚铁氰化钾[K,Fe(CN)。·3H20,GB1273,分析纯],加入少量蒸馏水使之溶解,转移至100mL容量瓶中,稀释至刻度,摇匀。334
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