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- DB32/T 3686-2019山羊副流感病毒3型检测技术规程
标准号:
DB32/T 3686-2019
标准名称:
山羊副流感病毒3型检测技术规程
标准类别:
江苏省地方标准(DB32)
标准状态:
现行-
发布日期:
2019-12-03 -
实施日期:
2019-12-25 出版语种:
简体中文下载格式:
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标准简介:
本标准规定了山羊副流感病毒3型(Caprine paraifluenza virus 3,CPIV3)的病原学检测(病毒核酸的RTPCR和荧光定量RTPCR检测)、血清学检测[血凝抑制(HI)试验]的技术要求。本标准适用于山羊副流感病毒3型及其感染情况的实验室检测。
引用标准:GB/T 6682 GB 19489 NY/T 541。
部分标准内容:
ICS65.020.30
B40
江苏省地
DB32
方标准
DB32/T36862019
山羊副流感病毒3型检测技术规程Technical regulations for detection of Caprine parainfluenza virus 32019-12-04发布
江苏省市场监督管理局
发布
2019-12-25实施
前言
本标准按照GB/T1.12009给出的规则起章,本标准由江苏省农业科学院提出并归口。本标准起草单位:江苏省农业科学院。DB32/T36862019
本标准主要起草人:李文良、毛立、李基棕、郝飞、刘茂军、杨蕾蕾、孙敏,1范围
山羊副流感病毒3型检测技术规程DB32/T3686-2019
本标准规定了山羊副流感病毒3型(Caprineparaifluenzavirus3,CPIV3)的病原学检测(病毒核酸的RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测)、血清学检测(血凝抑制(HI)试验)的技术要求本标准适用于山羊副流感病毒3型及其感染情况的实验室检测。2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修订单)适用于本文件。GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法GB19489实验室生物安全通用要求NY/T541善医诊断样品采集、保存与运输技术规范3病原学检测
3.1材料
微量移液器及吸头、DEPC水处理的离心管、吸头、PCR扩增管、TRIzol试剂、三氯甲烷、异丙醇、DEPC处理水(用水符合GB/T6682规定)、反转录酶/TaqDNA聚合酶混合液、2×一步法RT-PCR反应缓冲液、一步法荧光定量RT-PCR试剂盒、TAE缓冲液、琼脂糖、核酸染料、引物MF/MR、引物qMF/qMR与探针(附录A)。
3.2仪器设备
PCR仪、荧光定量PCR仪、台式冷冻离心机、电泳仪和水平电泳槽、凝胶成相仪(或紫外透射仪)3.3反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)3.3.1样品处理与RNA的提取
采集羊的鼻拭子、气管拭子或肺脏(样品的采集、保存和运输应符合NY/T541相关规定)。取200μL待检样品液至无菌无RNA酶的EP管中,使用TRIzol试剂、RNA提取试剂盒或自动化核酸提取仪等方法提取RNA。
3.3.2RT-PCR反应
RT-PCR反应使用20μL体系:10μL2×一步法RT-PCR反应缓冲液、引物MF/MR各0.5μL(10μmol/L)、0.4μL反转录酶/TaqDNA聚合酶混合液、4μLRNA模板,4.6μLDEPC处理水。反应条件为:45℃反转录30min94℃预变性2min94℃30s,54℃30s,72℃30s,进行35个循环:72℃延伸10min。
3.3.3结果判定
取PCR产物10uL,在1.2%琼脂糖凝胶中进行电泳,在凝胶成像系统中观察结果。样品PCR检测产物电泳后有大小为346bp的片段判断为山羊副流感病毒3型核酸阳性,无条带判断为阴性。每次试验应设置阴阳性对照,阴阳性对照应不出现或出现相应大小的条带。1
3.4荧光定量反转录-聚合酶链式反应(荧光定量RT-PCR)3.4.1核酸提取与荧光定量RT-PCR反应DB32/T3686-2019
核酸提取同3.3.1。荧光定量RT-PCR反应使用20μL体系:10μL2×一步法反应缓冲液,0.4μL反转录酶,0.4μLDNA聚合酶,引物qMF/qMR各0.4μL(10μmol/L),0.8μL探针,0.4uL染料,2μLRNA模板,5.2μLDEPC处理水。将PCR管置于荧光定量PCR仪器上进行RT-PCR扩增,程序如下:42℃5min:95℃10s:95℃5s,60℃34s,共进行40个循环。3.4.2荧光定量RT-PCR结果判定
阳性对照扩增曲线呈标准的S曲线,且Ct值<30。阴性对照扩增曲线应为基线下的水平线。若样本曲线呈S形曲线,且Ct值<38为阳性:未出现扩增曲线为阴性。4血清学检测血凝抑制(HI)试验4.1材料
微量移液器及配套吸头、96孔V型微量反应板、生理盐水、1%豚鼠红细胞悬液(配制方法见附录B)、病毒液(相关试验操作应符合GB19489的要求)、标准阳性血清、标准阴性血清。4.2仪器设备
离心机、恒温培养箱。
4.3病毒血凝效价测定
每次HI试验前应对病毒血凝效价进行测定,检测与判定方法如下:一在反应板一排各孔中加25μL生理盐水:一第一孔中加25uL病毒分离液,按照1:2倍比稀释,最后一孔不加抗原作阴性对照。每孔中再加25μLPBS
每孔加25μL1%豚鼠红细胞液,37℃孵育40min;一当红细胞被凝集时,红细胞均匀分布在反应板底部,反应板倾斜片刻,红细胞不下滑;红细胞未被凝集时,反应板倾斜片刻,可见沉淀的红细胞向下滑动,形成流线。HA效价为全部红细胞出现凝集时的最高稀释倍数。4.4HI试验
按如下方法进行HI试验:
一一在96孔V型微量反应板各孔中加25证生理盐水:一一加25L经处理的血清于第一孔中,混匀后取25uL加到第2孔中,依次倍比稀释,从第2孔加至第11孔,第11孔混匀后吸取25μL弃去,最后1孔不加血清作为对照;一一每孔中加25μL4个HA单位的病毒抗原,37℃孵育40min;一每孔加25μL1%豚鼠红细胞液,37℃孵育40min。4.5结果判定
将反应板倾斜70度左右,若无凝集反应,则沉淀的红细胞向下滑动,呈流线状,记录为抗体阳性。完全抑制凝集的抗体最高稀释倍数为血清的H抗体滴度,抗体滴度大于等于16为阳性,小于等于8为阴性。若检测发病后双份血清(第一份血清应在临床症状出现后立即采集,第二份血清在两周后采集),抗体滴度上升4倍或4倍以上时,表明羊只近期被感染。2
引物序列
A.1
引物
ME
MR
qMF
qMR
CPIV3Probe
A.2
引物的溶解
附录A
(资料性附录)
引物
表A.1用于RT-PCR和荧光定量RT-PCR检测的引物、探针靶基因
M基因
M基因
M基因
M基因
M基因
序列(5'-3')
AGTGATCTAGATGATGATCCA
GTTATTGATCCAATTGCTGT
GCTTGGCTTCTTTGAAATGG
GCCTGCAGAAGTTCCTTGTC
DB32/T36862019
产物
346bp
150bp
FAM-CAATCGGACTAGCCAAGTATGGTGGGA-TAMRA
引物MF、MR、qMF、qMR用灭菌的DEPC处理水溶解到浓度为10μmol/L:CPIV3Probe用灭菌的DEPC处理水溶解到浓度为10μmol/L。3
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