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【农业行业标准(NY)】 农药残留检测用丁酰胆碱酯酶
本网站 发布时间:
2024-06-24 22:44:06
- NY/T1157-2006
- 现行
标准号:
NY/T 1157-2006
标准名称:
农药残留检测用丁酰胆碱酯酶
标准类别:
农业行业标准(NY)
标准状态:
现行-
发布日期:
2006-07-10 -
实施日期:
2006-10-01 出版语种:
简体中文下载格式:
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标准简介:
标准下载解压密码:www.bzxz.net
本标准规定了农药残留检测专用丁胆碱酯酶的要求、实验方法、检验规则、标志、包装、运输和贮存。本标准适用于蔬菜、水果类农产品中有机磷和氨基甲酸酯类农药的残留快速检测。 NY/T 1157-2006 农药残留检测用丁酰胆碱酯酶 NY/T1157-2006

部分标准内容:
ICS65.100
中华人民共和国农业行业标准
NY/T1157—2006
农药残留检测专用丁酰胆碱酯酶Butylcholinesterase for the rapid bioassay of pesticide residues2006-07-10发布
2006-10-01实施
中华人民共和国农业部发布
本部分附录A为规范性附录。
本标准由中华人民共和国农业部种植业管理司提出并归口。NY/T1157—2006
本标准起草单位:农业部农药检定所、华南农业大学、广东省东莞市农业科学研究中心。本标准起草人:刘光学、徐汉虹、侯学文、杨晓云、廖美德、秦冬梅、何艺兵、陶传江、昊美良、江南龚勇、朱光艳、李友顺、宋稳成。I
1范围
农药残留检测专用丁酰胆碱酯酶NY/T1157—2006
本标准规定了农药残留检测专用丁胆碱酯酶的要求、实验方法、检验规则、标志、包装、运输和贮存。本标准适用于蔬菜、水果类农产品中有机磷和氨基甲酸酯类农药的残留快速检测。2规范性引用文件
下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是标注日期后的引用文件,其后所有的修改(不包括勘误内容)或修订版均不适用于本标准。然而,鼓励根据标准达成协议的各方研究是否使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准。NY/T448蔬菜上有机磷和氨基甲酸酯类农药残留的快速检测方法CB/T191包装储运图示标志
3要求
3.1外观
白色至粉红色疏松粉末,不吸潮成团。3.2比活力
比活力大于或等于0.5U/mg蛋白(测定方法见附录A)。表观△A412值应大于或等于0.60。3.3定性
3.3.1SDS—PAGE(SodiumDodecylSulphate-polyacrylamidegelElectrophoresis)(型式检验项目)酶干粉溶液经SDS一PAGE后在90kD处有一明显条带。3.3.2Km值(型式检验项目)
3.3.3布比卡因抑制试验
1.5mmol/L的布比卡因抑制试验,布比卡因对酶活性抑制率大于70%。3.4稳定性
在-18℃条件下保存1年,其活力损失应小于30%。3.5敏感性
农药对丁酰胆碱酯酶的抑制率大于70%时,丁酰胆碱酯酶对农药的敏感性(农药最低检出浓度)应符合表1的规定。
酰胆碱酯酶对农药的敏感性表
农药中文名
克百威
敌敌畏
甲胺磷
氧乐果
灭多威
英文通用名
carbofuran
dlichlorovos
methamidophos
omethcate
methomay!
最低检出浓度(溶液)
(mg/L)
NY/T1157—2006
3.6装量
根据酶活力测定结果分装,每支最小包装量大于24U,符合NY/T448的要求,每支最小包装量应可以测定1000个样品。
4检测方法
4.1外观
目测法
4.2酶活力测定与计算
见附录A。
4.3比活力
见附录A。
4.4定性
4.4.1 SDS-PAGE
见附录 B。
4.4.2Km值
见附录 C。
4.4.3布比卡因抑制试验
见附录D。
4.5酶稳定性测定
见附录E。
4.6酶敏感性测定
见附录F。
4.7蛋白含量测定
见附件G。
5检验规则
5.1组批和抽样
以相同工艺流程在同一时间制备的酶产品为一批次。在同批次产品中以随机抽样的方式抽取至少3支样品供检。
5.2出厂检验
产品出厂前,应由生产厂的检验部门按本标准规定逐批进行外观、比活力检验。检验合格后,出具合格证并在包装箱内(外)附有签署质量合格证的产品方可出厂。5.3型式检验
型式检验对产品进行全面检验,即对本标准规定的全部要求进行检验。一般每半年进行一次。有下列情况之一者亦应进行:a)更改主要原辅材料或更改关键工艺:b)长期停产后,恢复生产时;
c)国家质量监督部门提出进行型式检验要求时。5.4判定原则
5.4.1出厂检验
外观,比活力如有不符合本标准时,对不合格项目从该批货中加倍抽样复检。复检结果仍有一项不2
符合本标准,则判定该批产品为不合格。5.4.2型式检验
NY/T1157—2006
除外观、比活力外,其他型式检验项目中有一项不合格,即判定该批产品不合格。6标志、包装、运输、购存
6.1标志
6.1.1产品包装上应标明产品名称、酶活力,制造者的名称和地址、生产日期、保质期,产品标准号、贮存条件、单位产品数量。
6.1.2每支(单位)产品上应标明产品名称、酶活力、制造者名称6.1.3储运图示的标志应符合GB/T191的有关规定和图示。6.2包装
酶产品密封包装。内、外包装材料应符合卫生要求,不易受压变形。6.3运输
6.3.1运输工具应清洁、卫生。不应与有害、有毒、有腐蚀性、易挥发物品混装运输。6.3.2运输过程中应保持低温状态,快装快运。防止日晒、受潮、挤压,轻拿轻放。6.4存
6.4.1产品不得与有害、有毒、有腐蚀性、易挥发物品同库贮存。6.4.2产品应贮存在-18℃环境中,注意防潮。6.5保质期
符合贮存条件下,产品有效期为一年。e
NY/T11572006
A.1酶活力测定原理
附录A
(规范性附录)
酶活力测定方法
依据Ellman法,硫代丁酰胆碱(BuTC)在丁酰胆碱酯酶(BuChE)作用下,被水解成硫代胆碱和丁酸,硫代胆碱可与二殖双对硝基萃甲酸(DTNB)反应生成黄色产物,该产物在波长412nm处有最大吸收峰,因此可在此波长下进行比色,测定酶活性。反应过程如下:(CH)NCHCHSCOCH,CHCH+H,O
(CH)NCHCHSH+NO
BuTChE
(CH)NCHCHSS
A.2酶活力单位
(CHNCHCHSH+CHCH.CHCOOH
NO2+HS
NO(黄色)
在37C,0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液条件下,每分钟分解1umol碘化硫代丁酰胆碱为一个酶活力单位(U)。
A.3试剂配制
A.3.1磷酸缓冲液:准确称取磷酸氢二钠(NazHPO,·12H.O)33.92g,磷酸二氢钠(NaH,PO4*2HO)0.83g溶解后定容至1000mL即为pH8.00.1mol/的磷酸缓冲液。A.3.2丁酰胆碱酯酶液:根据酶活性情况按要求用0.1mol/L的PH8.0磷酸缓冲液溶解,反应前后吸光度差值△A控制在大于或等于0.4之间。A.3.3碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液:取100mgBuTCI溶于10mL上述pH8.0磷酸缓冲液中,即为碘化硫代工酰胆碱(BuTCI)溶液。A.3.4二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液:取60mgDTNB溶于10mL上述PH8.0磷酸缓冲液中。A.4测定步骤与计算
取A,B两支试管,分别加人0.1mol/pH8.0磷酸缓冲液3.0mL,加人丁酰胆碱酯酶液50L和二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液50μL,置于(37±1)t水浴中保温15min~30min(根据室温的不同调整水浴时间)后,于A试管中加人0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液50L,作为标准液调零;B试管加人50μL碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液,混匀后立即倒入玻璃比色杯中比色,记录3min前后的吸光值变化值,记为AA412值。每一酶液重复测定3次,取平均值(AA412)进行分析。酶活力单位数计算公式A1为:
AA412-V
酶活力单位数(U)=
式中:
反应前后A412吸光度的差值;
反应体系总体积,本体系为3.15×10-3L;黄色产物摩尔吸光系数,为1.36×10+L(mol·cm)-1一比色皿光程,单位为厘米(cm);T—反应时间,本法T为3min;
摩尔换算为微摩尔的换算系数。比活力计算
根据酶活力单位数及蛋白含量,可得酶的比活力。计算公式如A.2:活力单位(U)
比活力(U/mg)=
蛋白质量数(mg)
NY/T1157—2006
NY/T1157-—2006
B.1材料与仪器
B.1.1化学试剂
丙烯酰胺
甲叉双丙烯酰胺
十二烷基苯磺酸钠
三羟甲基氨基甲烷(Tris)
巯基乙醇
考马斯亮蓝
甘氨酸
蛋白分子量标记
B.1.2仪器
电泳系统
试剂配制
30%丙烯酰胺贮备液
丙烯酰胺
甲叉双丙烯酰胺
用蒸增水定容至100mL
22×上样缓冲液
Tris-Cl(pH6.8)
溴酚蓝
巯基乙醇(临用前加人)
B.2.3浓缩胶缓冲液
1mol/LTris-Cl(pH6.8)
B.2.4分离胶缓冲液
1.5mol/LTris*CI(pH8.8)
5电极缓冲液(g/L)
附录B
(规范性附录)
SDS-PAGE
【SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳】
100mmal/L
4%(w/g)
20%(w/g)
5%(v/)
甘氨酸
染色液
考马斯亮蓝G-25
冰醋酸
脱色液
B.3方法与步骤
0.25%(w/v)
45%(/)
10%(/)
甲醇(v):冰醋酸(v):水(v)=75:50:375B.3.1准备好玻璃板,用乙醇擦净,蒸增水冲洗,并按照仪器要求安装好电泳槽。B.3.2配制不连续电泳凝胶:浓缩胶5%:分离胶12%。配方如下(单位mL):浓缩胶
30%丙烯酰腰溶液
1.5mol/LTnsCl(pH8.8)
0.5mol/LTris.Cl(pH6.8)
10%SDS
10%过硫酸铵溶液
NY/T1157—2006
分高胶
先配制分离胶溶液,加人两玻璃板之间,避免产生气泡,并加人正丁醇覆盖凝胶表面隔断空气,以利于凝胶聚合;
B.3.3分离胶聚合后,倾去正丁醇,用蒸馏水冲洗干净;配制浓缩胶溶液,注入到分离胶上端,插入梳子,避免产生气泡;B.3.4
离胶;
待凝胶合后,拔出梳子,冲洗点样孔,将凝胶放人电泳槽中,加人电极缓冲液,上槽液漫过分电泳样品的准备:将等体积的待测样品液与2×上样缓冲液混合,置于沸水中,沸水浴5min;按次序,用微量注射器在点样孔内加人适量体积的电泳样品;B.3.7
上样完毕后,接通电源,开始电泳。电泳时,在浓缩胶内控制电流在10mA;分离胶内控制电流B.3.8
在30mA。直到溴酚蓝距分高胶底部5~10mm时,断开电源;B.3.9取下凝胶,做好标记,将凝胶置于装有0.25%考马斯亮蓝染色液的平盘中,染色4h~5h;B.3.10染色结束时,取出凝胶,蒸馏水冲洗后,置于装有脱色液的平盘中,振荡脱色,更换脱色液直到电泳条带清晰为止;
B.3.11观察结果,用凝胶成像扫描仪分析、照相记录。7
NY/T1157—2006
C.1试剂配制
同附录A.1项。
测定步骤
附录C
(规范性附录】
Km值测定
取两个石英比色杯,一个作空白对照,一个用来测定,依次按照下表加人底物和磷酸缓冲液,样品杯中加人酶液,按照A.1的方法操作,每30s读数一次,共3min~5min,测定每个底物浓度下t~AA412关系曲线,根据曲线线形部分的斜率计算反应初速度o(μmol/L/min),取u和底物浓度的倒数,作底物浓度对u的双倒数曲线,直线的横截距为-1/Km,纵截距为1/V(最大反应速度),计算出Km值。表C-1不同底物浓度配比表
BuTCI浓度,mmol/L
10mg/mlBuTCI溶液,L
0.1mol/LpH8.0的磷酸缓冲液,mL6mg/mlDTNB游液
薄液,μL
D.1试剂配制
1.5mmol/L布比卡因溶液;
其余试剂配制同A.1。
D.2测定步骤
附录D
【规范性附录】
布比卡因抑制实验
NY/T1157-2006
取AB两支试管,A管加人0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液3.0mL为对照管,B管加人1.5mmol/L布比卡因3.0mL,然后分别加人50L酶液,50L二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液,置于37C水浴15min~30min后再分别加人50L碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液,混匀后立即倒人玻璃比色杯中比色,记录3min前后的A值,每一标准农药浓度重复测定3次,取4A平均值进行分析。抑制率按D.1式计算:
抑制率(%)=4-AAs×100
式中:
AAc—对照管3min后与3min前吸光值之差:AAs样品管3min后与3min前吸光值之差。(D.1)
NY/T1157—2006
E.1试剂配制
同附录A.1。bZxz.net
测定步骤
附录E
(规范性附录
酶稳定性测定
按照附录A规定的方法测定酶活力,再按E.1式计算酶活力损失率。酶活力测定值
产品中酶活力标示值)×100
酶活力损失率(%)=(1-
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中华人民共和国农业行业标准
NY/T1157—2006
农药残留检测专用丁酰胆碱酯酶Butylcholinesterase for the rapid bioassay of pesticide residues2006-07-10发布
2006-10-01实施
中华人民共和国农业部发布
本部分附录A为规范性附录。
本标准由中华人民共和国农业部种植业管理司提出并归口。NY/T1157—2006
本标准起草单位:农业部农药检定所、华南农业大学、广东省东莞市农业科学研究中心。本标准起草人:刘光学、徐汉虹、侯学文、杨晓云、廖美德、秦冬梅、何艺兵、陶传江、昊美良、江南龚勇、朱光艳、李友顺、宋稳成。I
1范围
农药残留检测专用丁酰胆碱酯酶NY/T1157—2006
本标准规定了农药残留检测专用丁胆碱酯酶的要求、实验方法、检验规则、标志、包装、运输和贮存。本标准适用于蔬菜、水果类农产品中有机磷和氨基甲酸酯类农药的残留快速检测。2规范性引用文件
下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是标注日期后的引用文件,其后所有的修改(不包括勘误内容)或修订版均不适用于本标准。然而,鼓励根据标准达成协议的各方研究是否使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准。NY/T448蔬菜上有机磷和氨基甲酸酯类农药残留的快速检测方法CB/T191包装储运图示标志
3要求
3.1外观
白色至粉红色疏松粉末,不吸潮成团。3.2比活力
比活力大于或等于0.5U/mg蛋白(测定方法见附录A)。表观△A412值应大于或等于0.60。3.3定性
3.3.1SDS—PAGE(SodiumDodecylSulphate-polyacrylamidegelElectrophoresis)(型式检验项目)酶干粉溶液经SDS一PAGE后在90kD处有一明显条带。3.3.2Km值(型式检验项目)
3.3.3布比卡因抑制试验
1.5mmol/L的布比卡因抑制试验,布比卡因对酶活性抑制率大于70%。3.4稳定性
在-18℃条件下保存1年,其活力损失应小于30%。3.5敏感性
农药对丁酰胆碱酯酶的抑制率大于70%时,丁酰胆碱酯酶对农药的敏感性(农药最低检出浓度)应符合表1的规定。
酰胆碱酯酶对农药的敏感性表
农药中文名
克百威
敌敌畏
甲胺磷
氧乐果
灭多威
英文通用名
carbofuran
dlichlorovos
methamidophos
omethcate
methomay!
最低检出浓度(溶液)
(mg/L)
NY/T1157—2006
3.6装量
根据酶活力测定结果分装,每支最小包装量大于24U,符合NY/T448的要求,每支最小包装量应可以测定1000个样品。
4检测方法
4.1外观
目测法
4.2酶活力测定与计算
见附录A。
4.3比活力
见附录A。
4.4定性
4.4.1 SDS-PAGE
见附录 B。
4.4.2Km值
见附录 C。
4.4.3布比卡因抑制试验
见附录D。
4.5酶稳定性测定
见附录E。
4.6酶敏感性测定
见附录F。
4.7蛋白含量测定
见附件G。
5检验规则
5.1组批和抽样
以相同工艺流程在同一时间制备的酶产品为一批次。在同批次产品中以随机抽样的方式抽取至少3支样品供检。
5.2出厂检验
产品出厂前,应由生产厂的检验部门按本标准规定逐批进行外观、比活力检验。检验合格后,出具合格证并在包装箱内(外)附有签署质量合格证的产品方可出厂。5.3型式检验
型式检验对产品进行全面检验,即对本标准规定的全部要求进行检验。一般每半年进行一次。有下列情况之一者亦应进行:a)更改主要原辅材料或更改关键工艺:b)长期停产后,恢复生产时;
c)国家质量监督部门提出进行型式检验要求时。5.4判定原则
5.4.1出厂检验
外观,比活力如有不符合本标准时,对不合格项目从该批货中加倍抽样复检。复检结果仍有一项不2
符合本标准,则判定该批产品为不合格。5.4.2型式检验
NY/T1157—2006
除外观、比活力外,其他型式检验项目中有一项不合格,即判定该批产品不合格。6标志、包装、运输、购存
6.1标志
6.1.1产品包装上应标明产品名称、酶活力,制造者的名称和地址、生产日期、保质期,产品标准号、贮存条件、单位产品数量。
6.1.2每支(单位)产品上应标明产品名称、酶活力、制造者名称6.1.3储运图示的标志应符合GB/T191的有关规定和图示。6.2包装
酶产品密封包装。内、外包装材料应符合卫生要求,不易受压变形。6.3运输
6.3.1运输工具应清洁、卫生。不应与有害、有毒、有腐蚀性、易挥发物品混装运输。6.3.2运输过程中应保持低温状态,快装快运。防止日晒、受潮、挤压,轻拿轻放。6.4存
6.4.1产品不得与有害、有毒、有腐蚀性、易挥发物品同库贮存。6.4.2产品应贮存在-18℃环境中,注意防潮。6.5保质期
符合贮存条件下,产品有效期为一年。e
NY/T11572006
A.1酶活力测定原理
附录A
(规范性附录)
酶活力测定方法
依据Ellman法,硫代丁酰胆碱(BuTC)在丁酰胆碱酯酶(BuChE)作用下,被水解成硫代胆碱和丁酸,硫代胆碱可与二殖双对硝基萃甲酸(DTNB)反应生成黄色产物,该产物在波长412nm处有最大吸收峰,因此可在此波长下进行比色,测定酶活性。反应过程如下:(CH)NCHCHSCOCH,CHCH+H,O
(CH)NCHCHSH+NO
BuTChE
(CH)NCHCHSS
A.2酶活力单位
(CHNCHCHSH+CHCH.CHCOOH
NO2+HS
NO(黄色)
在37C,0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液条件下,每分钟分解1umol碘化硫代丁酰胆碱为一个酶活力单位(U)。
A.3试剂配制
A.3.1磷酸缓冲液:准确称取磷酸氢二钠(NazHPO,·12H.O)33.92g,磷酸二氢钠(NaH,PO4*2HO)0.83g溶解后定容至1000mL即为pH8.00.1mol/的磷酸缓冲液。A.3.2丁酰胆碱酯酶液:根据酶活性情况按要求用0.1mol/L的PH8.0磷酸缓冲液溶解,反应前后吸光度差值△A控制在大于或等于0.4之间。A.3.3碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液:取100mgBuTCI溶于10mL上述pH8.0磷酸缓冲液中,即为碘化硫代工酰胆碱(BuTCI)溶液。A.3.4二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液:取60mgDTNB溶于10mL上述PH8.0磷酸缓冲液中。A.4测定步骤与计算
取A,B两支试管,分别加人0.1mol/pH8.0磷酸缓冲液3.0mL,加人丁酰胆碱酯酶液50L和二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液50μL,置于(37±1)t水浴中保温15min~30min(根据室温的不同调整水浴时间)后,于A试管中加人0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液50L,作为标准液调零;B试管加人50μL碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液,混匀后立即倒入玻璃比色杯中比色,记录3min前后的吸光值变化值,记为AA412值。每一酶液重复测定3次,取平均值(AA412)进行分析。酶活力单位数计算公式A1为:
AA412-V
酶活力单位数(U)=
式中:
反应前后A412吸光度的差值;
反应体系总体积,本体系为3.15×10-3L;黄色产物摩尔吸光系数,为1.36×10+L(mol·cm)-1一比色皿光程,单位为厘米(cm);T—反应时间,本法T为3min;
摩尔换算为微摩尔的换算系数。比活力计算
根据酶活力单位数及蛋白含量,可得酶的比活力。计算公式如A.2:活力单位(U)
比活力(U/mg)=
蛋白质量数(mg)
NY/T1157—2006
NY/T1157-—2006
B.1材料与仪器
B.1.1化学试剂
丙烯酰胺
甲叉双丙烯酰胺
十二烷基苯磺酸钠
三羟甲基氨基甲烷(Tris)
巯基乙醇
考马斯亮蓝
甘氨酸
蛋白分子量标记
B.1.2仪器
电泳系统
试剂配制
30%丙烯酰胺贮备液
丙烯酰胺
甲叉双丙烯酰胺
用蒸增水定容至100mL
22×上样缓冲液
Tris-Cl(pH6.8)
溴酚蓝
巯基乙醇(临用前加人)
B.2.3浓缩胶缓冲液
1mol/LTris-Cl(pH6.8)
B.2.4分离胶缓冲液
1.5mol/LTris*CI(pH8.8)
5电极缓冲液(g/L)
附录B
(规范性附录)
SDS-PAGE
【SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳】
100mmal/L
4%(w/g)
20%(w/g)
5%(v/)
甘氨酸
染色液
考马斯亮蓝G-25
冰醋酸
脱色液
B.3方法与步骤
0.25%(w/v)
45%(/)
10%(/)
甲醇(v):冰醋酸(v):水(v)=75:50:375B.3.1准备好玻璃板,用乙醇擦净,蒸增水冲洗,并按照仪器要求安装好电泳槽。B.3.2配制不连续电泳凝胶:浓缩胶5%:分离胶12%。配方如下(单位mL):浓缩胶
30%丙烯酰腰溶液
1.5mol/LTnsCl(pH8.8)
0.5mol/LTris.Cl(pH6.8)
10%SDS
10%过硫酸铵溶液
NY/T1157—2006
分高胶
先配制分离胶溶液,加人两玻璃板之间,避免产生气泡,并加人正丁醇覆盖凝胶表面隔断空气,以利于凝胶聚合;
B.3.3分离胶聚合后,倾去正丁醇,用蒸馏水冲洗干净;配制浓缩胶溶液,注入到分离胶上端,插入梳子,避免产生气泡;B.3.4
离胶;
待凝胶合后,拔出梳子,冲洗点样孔,将凝胶放人电泳槽中,加人电极缓冲液,上槽液漫过分电泳样品的准备:将等体积的待测样品液与2×上样缓冲液混合,置于沸水中,沸水浴5min;按次序,用微量注射器在点样孔内加人适量体积的电泳样品;B.3.7
上样完毕后,接通电源,开始电泳。电泳时,在浓缩胶内控制电流在10mA;分离胶内控制电流B.3.8
在30mA。直到溴酚蓝距分高胶底部5~10mm时,断开电源;B.3.9取下凝胶,做好标记,将凝胶置于装有0.25%考马斯亮蓝染色液的平盘中,染色4h~5h;B.3.10染色结束时,取出凝胶,蒸馏水冲洗后,置于装有脱色液的平盘中,振荡脱色,更换脱色液直到电泳条带清晰为止;
B.3.11观察结果,用凝胶成像扫描仪分析、照相记录。7
NY/T1157—2006
C.1试剂配制
同附录A.1项。
测定步骤
附录C
(规范性附录】
Km值测定
取两个石英比色杯,一个作空白对照,一个用来测定,依次按照下表加人底物和磷酸缓冲液,样品杯中加人酶液,按照A.1的方法操作,每30s读数一次,共3min~5min,测定每个底物浓度下t~AA412关系曲线,根据曲线线形部分的斜率计算反应初速度o(μmol/L/min),取u和底物浓度的倒数,作底物浓度对u的双倒数曲线,直线的横截距为-1/Km,纵截距为1/V(最大反应速度),计算出Km值。表C-1不同底物浓度配比表
BuTCI浓度,mmol/L
10mg/mlBuTCI溶液,L
0.1mol/LpH8.0的磷酸缓冲液,mL6mg/mlDTNB游液
薄液,μL
D.1试剂配制
1.5mmol/L布比卡因溶液;
其余试剂配制同A.1。
D.2测定步骤
附录D
【规范性附录】
布比卡因抑制实验
NY/T1157-2006
取AB两支试管,A管加人0.1mol/LpH8.0磷酸缓冲液3.0mL为对照管,B管加人1.5mmol/L布比卡因3.0mL,然后分别加人50L酶液,50L二硫代双对硝基苯甲酸(DTNB)溶液,置于37C水浴15min~30min后再分别加人50L碘化硫代丁酰胆碱(BuTCI)溶液,混匀后立即倒人玻璃比色杯中比色,记录3min前后的A值,每一标准农药浓度重复测定3次,取4A平均值进行分析。抑制率按D.1式计算:
抑制率(%)=4-AAs×100
式中:
AAc—对照管3min后与3min前吸光值之差:AAs样品管3min后与3min前吸光值之差。(D.1)
NY/T1157—2006
E.1试剂配制
同附录A.1。bZxz.net
测定步骤
附录E
(规范性附录
酶稳定性测定
按照附录A规定的方法测定酶活力,再按E.1式计算酶活力损失率。酶活力测定值
产品中酶活力标示值)×100
酶活力损失率(%)=(1-
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