【国家标准】 猪繁殖和呼吸综合症诊断方法

前言

猪繁殖和呼吸综合症（简称 PRRS）是由 PRRS 病毒引起的一种接触传染性疾病。各种年龄的猪均易感染。妊娠母猪感染后可引起流产、死胎、木乃伊胎及弱胎，仔猪可发生呼吸障碍和高病死亡率，其他猪常呈隐性感染或仅出现轻度的呼吸道症状。PRRS 病毒有欧洲型和美洲型两种主要抗原型，分别以 LV 和 VR-2332 为代表株，型间具有明显的抗原交叉反应性。据现有资料，我国流行的毒株为美洲型。本病几乎发生于世界各养猪国家，并于九十年代中期传入我国。由于其对养猪业的严重威胁性，国际兽疫局（1996）已将本病列为 B 类传染病。

大连动植物检疫局在国内率先开展了 PRRS 的研究工作，建立了具有与国际同等水平的病毒分离鉴定、间接免疫荧光试验和血清中和试验等诊断方法。其他单位也相继建立了多种酶联免疫吸附试验等。

本标准是在综合我国科研成果的基础上，参照国际兽疫局（OIE）编写的《哺乳动物、禽和蜜蜂 A 和 B 类疾病诊断试验和疫苗标准手册》（第三版,1996）编写的。其技术内容与 OIE 所推荐的基本一致。

本标准的附录 A、附录 B 和附录 C 都是标准的附录。

本标准由农业部提出。

本标准起草单位：中华人民共和国大连动植物检疫局。

本标准起草人：孙颖杰、苏永生、潘凤城、孙延峰、简中友。

中华人民共和国国家标准

猪繁殖和呼吸综合症诊断方法 GB/T 18090—2000

Diagnostic methods of porcine reproductive
and respiratory syndrome

1 范围

本标准规定了猪繁殖和呼吸综合症(PRRS)的诊断方法。
本标准适用于猪繁殖和呼吸综合症的诊断。

2 诊断方法的种类和选用

PRRS的诊断方法有多种。依据临床症状和病理变化只可作出初步诊断，确诊必须依靠实验室检查。目前已建立和应用的实验室诊断技术有病毒的分离与鉴定、免疫过氧化物酶单层试验(IPMA)、间接免疫荧光试验(IFA)、间接酶联免疫吸附试验(间接 ELISA)和血清中和试验(SN)等。病毒的分离与鉴定多用于急性病例的确诊和新疫区的确定，其余4种方法主要用于检测PRRS病毒抗体，IPMA、JFA和间接ELISA三者特异性相似，但以间接ELISA的敏感性最高。应用这三种方法一般不易区别病毒的抗原类型，故多适用于确定病性。SN反应应具有明显的抗原型别差异，因此，它既适用于确定病性，也适用于鉴定病毒的抗原类型。中和抗体出现最晚，不适合于早期诊断。
本标准指定上述五种实验室诊断技术为我国进出境和国内生猪PRRS的诊断方法，保证了我国对PRRS的诊断与国外的一致性。在实际应用时，可根据需要和条件，从中选用1~2种方法即可。

3 病毒的分离与鉴定

3.1 材料准备
3.1.1 器材：96孔细胞培养板、微量移液器、恒温水浴箱、二氧化碳(CO₂)恒温箱、普通冰箱及低温冰箱，离心机及离心管，组织研磨器，孔径0.2 μm的微滤薄膜，普通光学显微镜。
3.1.2 试剂：RPMI1640营养液，犊牛血清，青霉素(10⁴ IU/mL)与链霉素(10⁴ mg/mL)溶液，7.5%碳酸氢钠溶液等。
3.1.3 细胞培养物：猪原代肺泡巨噬细胞培养物(PAM)或MARC-145或HS₃H细胞。PAM由无PRRS猪获取，并经批次检验合格，制备和检验方法见附录B。MARC-145或HS₃H细胞由国家指定单位提供。
3.1.4 样品
3.1.4.1 样品的采取和送检：在发病早期，无菌地采取病猪的血清或腹水。对病死猪(如流产的死胎)和扑杀猪(如弱胎儿)，应立即采取肺、扁桃体及脾等组织数小块，置冰瓶内立即送检。不能立即检查者，应放-25℃～-30℃冰箱中，或加50%甘油生理盐水，4℃保存送检。
3.1.4.2 样品的处理：血清和腹水可直接使用，肺、脾和扁桃体等组织可单独使用，也可混合后使用。各组织剪碎后研磨成糊状，加入RPMI1640营养液，制成10%悬液，3 000×g离心15 min，吸取上清液，加入青霉素500 IU/mL、链霉素500 μg/mL、庆大霉素500 μg/mL和两性霉素B 200 μg/mL。怀疑有细菌

GB/T 18090－2000

污染的样品，也可用 0.2 μm 微孔滤膜过滤处理。

3.2 操作方法

3.2.1 稀释方法：

取 96 孔细胞培养板每孔加入细胞培养液 RPMI1640（含犊牛血清 10%、青霉素 100 IU/mL、链霉素 100 μg/mL、庆大霉素 50 μg/mL、两性霉素 B 10 μg/mL，pH=7.2）90 μL，在 A1 和 C1 孔内加入同一份已处理的样品各 10 μL（样品 10×稀释）。将板轻轻摇动后，从 A1 和 C1 排孔各取 10 μL 分别移入 B1 和 D1 排孔内（样品 100×稀释）。除第 6 和第 12 列留作正常细胞对照外，其他各孔的样品稀释方法同上。摇动稀释板后加盖，置 4℃冰箱内保存备用。

3.2.2 制备细胞板：

已建立的某些猴肾细胞系不能支持所有分离物特别是欧洲型病毒株的良好生长，因此病毒分离应首选 PAM 细胞。先将 PAM 细胞瓶用细胞培养液 RPMI1640 稀释，使细胞终浓度为 1×10⁵ 细胞/mL。或将 MARC-145 或 HSLH 细胞用 MEM 细胞营养液稀释，细胞终浓度为 5×10⁴ 细胞/mL。然后，在另一块 96 孔细胞培养板上每孔加入上述细胞悬液 100 μL。

按照上述操作，每板可检测 20 份样品，每份样品重复 2 个滴度。第 6 和第 12 列留作正常细胞对照（不接种样品）。

3.2.3 接种样品：

由样品稀释板每孔内各吸取稀释的样品液 50 μL，接种于已形成细胞单层的细胞板相应的孔内（第一代）。细胞板加盖后，放入 37℃ 5% 二氧化碳保湿恒温箱中培养，每天观察致细胞病变作用 (CPE)，连续观察 2 d～5 d。CPE 通常在接种后 1 d～4 d 内出现，主要呈现细胞圆缩、聚集、固缩，最后溶解脱落。

3.2.4 培养物盲传：

根据第一代培养物 CPE 出现的情况（通常在接种后的第 2 d～3 d）安排盲传。盲传时，不论 CPE 有无，一律各取孔内混悬液 25 μL，移入新细胞板相应的孔内。再于 37℃ 5% 二氧化碳保湿恒温箱中培养 2 d～5 d，每天观察 CPE。

3.3 结果的判断和解释

在第二代培养结束时，不论是否出现 CPE，对所有的孔必须采用免疫过氧化物酶单层试验 (IPMA) 或间接免疫荧光试验 (IFA) 进行终判；只要对 PRRS 病毒阳性血清呈现阳性反应，则被认定为 PRRS 病毒分离阳性。

4 免疫过氧化物酶单层试验（IPMA）

4.1 材料准备

4.1.1 器材：微量移液器、倒置显微镜等。

4.1.2 试剂

4.1.2.1 IPMA 诊断板的制备：见附录 B。

4.1.2.2 标准阳性血清、标准阴性血清和免抗猪过氧化物酶结合物均由国家指定单位提供。使用前按说明书规定用血清稀释液稀释至工作浓度。

4.1.2.3 洗涤液、血清稀释液和显色/底物溶液依照附录 A 自行配制。

4.1.3 样品：

采集被检猪血液，分离血清，血清必须新鲜透明不溶血无污染，密装于灭菌小瓶内，4℃ 或 -30℃ 冰箱保存或立即送检。试验前将被检血清统一编号，并用血清稀释液作 20 倍稀释。

4.2 操作方法

参照图 1。