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【国家标准(GB)】 实验动物 狂犬病病毒检测方法
本网站 发布时间:
2024-12-19 10:34:54
- GB/T14926.56-2008
- 现行
标准号:
GB/T 14926.56-2008
标准名称:
实验动物 狂犬病病毒检测方法
标准类别:
国家标准(GB)
标准状态:
现行-
发布日期:
2001-08-29 -
实施日期:
2009-03-01 出版语种:
简体中文下载格式:
.rar.pdf下载大小:
1.17 MB
替代情况:
替代GB/T 14926.56-2001

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标准简介:
标准下载解压密码:www.bzxz.net
本部分规定了狂犬病病毒(RV)的检测方法、试剂等。本部分适用于犬RV的检测。 GB/T 14926.56-2008 实验动物 狂犬病病毒检测方法 GB/T14926.56-2008

部分标准内容:
ICS 65.020.30
中华人民共和国国家标准
GB/T14926.56—2008
代替GB/T14926.56—2001
实验动物
狂犬病病毒检测方法
Laboratory animal-Method for examination of Rabies virus2008-12-10发布
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局数码防伪
中国国家标准化管理委员会
2009-03-01实施
GB/T14926《实验动物》共54个部分,为不同微生物和病毒检测技术方法。GB/T14926.56-—2008
本部分自实施之日起代替GB/T14926.56一2001《实验动物狂犬病病毒检测方法》。本部分与GB/T14926.56一2001相比主要技术差异如下:删除原标准中“2引用标准”内容;a)
对原标准中“3原理”中所有内容改为“在微孔板上预包被纯化狂犬病毒抗原,使免疫反应在固相载体上进行。当被检血清中有狂犬病病毒抗体存在时,则与孔壁上的抗原形成抗原-抗体复合物,再与抗犬IgG酶标记物反应,最后通过测定酶作用底物催化后的产物,进行定性检测”
删除原标准中所有关于血凝抑制试验的试剂、方法及结果判定;c)
对原标准中所有关于酶联免疫吸附试验的内容进行修改,包括试剂、方法及结果判定等;对原标准中“6结果判定”中增加了“6.3基础级犬群体免疫抗体合格率:免疫抗体合格率e)
(被检动物抗体阳性数/被检动物总数)×100%。基础级犬群体免疫抗体合格率达到70%以上可判为该犬群免疫合格”内容。本部分由全国实验动物标准化技术委员会提出并归口。本部分由全国实验动物标准化技术委员会负责起草。本部分主要起草人:田克恭、陈西钊、曹振、王传彬、何秀敏、汤汉文。本部分所代替标准的历次版本发布情况为:-GB/T14926.56-2001。
1范围
实验动物
狂犬病病毒检测方法
GB/T14926的本部分规定了狂犬病病毒(RV)的检测方法、试剂等。本部分适用于犬RV的检测。
2原理
GB/T14926.56—2008
在微孔板上预包被纯化狂犬病毒抗原,使免疫反应在固相载体上进行。当被检血清中有狂犬病病毒抗体存在时,则与孔壁上的抗原形成抗原-抗体复合物,再与抗犬IgG酶标记物反应,最后通过测定酶作用底物催化后的产物,进行定性检测。3主要试剂和器材
3.1试剂
犬狂犬病毒IgG抗体检测试剂盒(定性),包括:a)预包被狂犬病毒抗原的微孔板;b)
狂犬病毒IgG酶标记物;
狂犬病毒IgG阳性对照;
狂犬病毒IgG临界对照;
狂犬病毒IgG阴性对照;
显色液A:磷酸氢=钠-柠檬酸缓冲液(0.05mol/L,pH5.0)1000mL,30%过氧化氢HzOzf)
(MW34.0)3.5mL;
显色液B:柠檬酸1.052g,乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Naz)0.186g,四甲基联苯胺(TMB)g)
0.25g,二甲基亚砜(DMSO)8.0mL,纯化水992mL;终止液:98%硫酸27.8mL,纯化水972.2mL:h)bZxz.net
i)10倍浓缩洗涤液:PBS(0.1mol/LpH7.2~7.4)995mL,吐温-20,5mL;样品稀释液:硼酸盐缓冲液(0.01mol/LpH8.0)956.0mL,甘油(MW92.09)40.0mL,酪蛋白j
(casein)10%硫柳汞钠溶液2.0mL,吐温-20,1.0mL1%酚红溶液,1.0mL。试剂在使用前应恢复至室温(18℃~25℃)。3.2器材
器材包括:
a)精密移液器10μL~100μL;b)一次性移液器吸头;
c)振荡器;
酶标仪(含450nm波长滤光片);e)
37℃恒温培养箱;
蒸馏水或去离子水;
100mL量筒;
离心机;
吸水纸。
GB/T14926.56—2008
4检测方法
4.1样品的准备
将采集到的待检犬血液样品离心,分离出待检犬血清或血浆。应避免使用染菌、溶血和高血脂的样品;室温保存样品不应超过8h,若试验在8h以后进行,需将样品保存在2℃~10℃,如保存超过1周,则应保存在一20℃并避免反复冻融。4.2试剂配置
将10倍浓缩洗涤液恢复至室温,并振摇,然后用去离子水或蒸馏水作10倍稀释。4.3稀释样品
将已分离好的犬血清或血浆用样品稀释液做1:10稀释,即取50μL血清或血浆加人到500μL样品稀释液中,并充分混匀。
4.4加样
取所需量的预包被微孔板条固定于板架上,依次加入稀释好的样品,100μL/孔,然后将阳性、阴性对照各加1孔,临界对照加3孔,100μL/孔,另留一孔不加样品作为空白对照,在记录纸上记录各样品和对照的次序或位置,剩余的板条放人密封袋中保存。4.5孵育
加样完成后,用封板膜覆盖板条,置37℃恒温培养箱中孵育30min。4.6洗板
甩净孔中液体,拍干,用稀释好的洗涤液加满每孔,停留1min后甩净、拍干,如此重复洗涤3次。4.7加酶
除空白对照外,其余各孔垂直滴加酶标记物1滴(50μL),置37℃恒温培养箱孵育30min。4.8显色
重复步骤4.6洗板3次,拍干后每孔(含空白对照孔)垂直滴加显色液A、B液各1滴,置37℃恒温培养箱避光显色10min。
4.9终止
每孔(含空白对照孔)立即加人终止液1滴,混匀后以空白孔调零,用酶标仪450nm波长测定A值。
5结果判定
5.1试验结果符合下列条件,方为有效:以空白孔调零,阴性对照值小于等于0.10,临界对照A值应在0.15~0.40之间,证明试验成立。5.2结果判定
5.2.1待检样品A值大于等于临界对照A值的平均值,判为阳性;5.2.2待检样品A值小于临界对照A值的平均值,判为阴性。6结巢解释
6.1基础级犬:接种疫苗后,经ELISA检测抗体效价达到阳性值判为合格。6.2SPF级犬,不应进行疫苗接种,对阳性检测结果,选用同一种方法或另一种方法重试。如为阳性则判为阳性。
6.3基础级犬群体免疫抗体合格率:免疫抗体合格率=(被检动物抗体阳性数/被检动物总数)×100%基础级犬群体免疫抗体合格率达到70%以上可判为该犬群免疫合格。2
结果报告
根据判定结果,作出报告。
GB/T14926.56—2008
GB/T14926.56-2008
#和国
中华人民共
国家标准
实验动物
狂犬病病毒检测方法
GB/T14926.56--2008
中国标准出版社出版发行
北京复兴门外三里河北街16号
邮政编码:100045
网址www.spc.net.cn
电话:68523946
68517548
中国标准出版社秦皇岛印刷厂印刷各地新华书店经销
开本880×12301/16
印张0.5
字数7千字
:2009年2月第一次印刷
2009年2月第一版
书号:155066·1-35768定价10.00元如有印装差错
由本社发行中心调换
版权专有侵权必究
举报电话:(010)68533533
小提示:此标准内容仅展示完整标准里的部分截取内容,若需要完整标准请到上方自行免费下载完整标准文档。
中华人民共和国国家标准
GB/T14926.56—2008
代替GB/T14926.56—2001
实验动物
狂犬病病毒检测方法
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中国国家标准化管理委员会
2009-03-01实施
GB/T14926《实验动物》共54个部分,为不同微生物和病毒检测技术方法。GB/T14926.56-—2008
本部分自实施之日起代替GB/T14926.56一2001《实验动物狂犬病病毒检测方法》。本部分与GB/T14926.56一2001相比主要技术差异如下:删除原标准中“2引用标准”内容;a)
对原标准中“3原理”中所有内容改为“在微孔板上预包被纯化狂犬病毒抗原,使免疫反应在固相载体上进行。当被检血清中有狂犬病病毒抗体存在时,则与孔壁上的抗原形成抗原-抗体复合物,再与抗犬IgG酶标记物反应,最后通过测定酶作用底物催化后的产物,进行定性检测”
删除原标准中所有关于血凝抑制试验的试剂、方法及结果判定;c)
对原标准中所有关于酶联免疫吸附试验的内容进行修改,包括试剂、方法及结果判定等;对原标准中“6结果判定”中增加了“6.3基础级犬群体免疫抗体合格率:免疫抗体合格率e)
(被检动物抗体阳性数/被检动物总数)×100%。基础级犬群体免疫抗体合格率达到70%以上可判为该犬群免疫合格”内容。本部分由全国实验动物标准化技术委员会提出并归口。本部分由全国实验动物标准化技术委员会负责起草。本部分主要起草人:田克恭、陈西钊、曹振、王传彬、何秀敏、汤汉文。本部分所代替标准的历次版本发布情况为:-GB/T14926.56-2001。
1范围
实验动物
狂犬病病毒检测方法
GB/T14926的本部分规定了狂犬病病毒(RV)的检测方法、试剂等。本部分适用于犬RV的检测。
2原理
GB/T14926.56—2008
在微孔板上预包被纯化狂犬病毒抗原,使免疫反应在固相载体上进行。当被检血清中有狂犬病病毒抗体存在时,则与孔壁上的抗原形成抗原-抗体复合物,再与抗犬IgG酶标记物反应,最后通过测定酶作用底物催化后的产物,进行定性检测。3主要试剂和器材
3.1试剂
犬狂犬病毒IgG抗体检测试剂盒(定性),包括:a)预包被狂犬病毒抗原的微孔板;b)
狂犬病毒IgG酶标记物;
狂犬病毒IgG阳性对照;
狂犬病毒IgG临界对照;
狂犬病毒IgG阴性对照;
显色液A:磷酸氢=钠-柠檬酸缓冲液(0.05mol/L,pH5.0)1000mL,30%过氧化氢HzOzf)
(MW34.0)3.5mL;
显色液B:柠檬酸1.052g,乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Naz)0.186g,四甲基联苯胺(TMB)g)
0.25g,二甲基亚砜(DMSO)8.0mL,纯化水992mL;终止液:98%硫酸27.8mL,纯化水972.2mL:h)bZxz.net
i)10倍浓缩洗涤液:PBS(0.1mol/LpH7.2~7.4)995mL,吐温-20,5mL;样品稀释液:硼酸盐缓冲液(0.01mol/LpH8.0)956.0mL,甘油(MW92.09)40.0mL,酪蛋白j
(casein)10%硫柳汞钠溶液2.0mL,吐温-20,1.0mL1%酚红溶液,1.0mL。试剂在使用前应恢复至室温(18℃~25℃)。3.2器材
器材包括:
a)精密移液器10μL~100μL;b)一次性移液器吸头;
c)振荡器;
酶标仪(含450nm波长滤光片);e)
37℃恒温培养箱;
蒸馏水或去离子水;
100mL量筒;
离心机;
吸水纸。
GB/T14926.56—2008
4检测方法
4.1样品的准备
将采集到的待检犬血液样品离心,分离出待检犬血清或血浆。应避免使用染菌、溶血和高血脂的样品;室温保存样品不应超过8h,若试验在8h以后进行,需将样品保存在2℃~10℃,如保存超过1周,则应保存在一20℃并避免反复冻融。4.2试剂配置
将10倍浓缩洗涤液恢复至室温,并振摇,然后用去离子水或蒸馏水作10倍稀释。4.3稀释样品
将已分离好的犬血清或血浆用样品稀释液做1:10稀释,即取50μL血清或血浆加人到500μL样品稀释液中,并充分混匀。
4.4加样
取所需量的预包被微孔板条固定于板架上,依次加入稀释好的样品,100μL/孔,然后将阳性、阴性对照各加1孔,临界对照加3孔,100μL/孔,另留一孔不加样品作为空白对照,在记录纸上记录各样品和对照的次序或位置,剩余的板条放人密封袋中保存。4.5孵育
加样完成后,用封板膜覆盖板条,置37℃恒温培养箱中孵育30min。4.6洗板
甩净孔中液体,拍干,用稀释好的洗涤液加满每孔,停留1min后甩净、拍干,如此重复洗涤3次。4.7加酶
除空白对照外,其余各孔垂直滴加酶标记物1滴(50μL),置37℃恒温培养箱孵育30min。4.8显色
重复步骤4.6洗板3次,拍干后每孔(含空白对照孔)垂直滴加显色液A、B液各1滴,置37℃恒温培养箱避光显色10min。
4.9终止
每孔(含空白对照孔)立即加人终止液1滴,混匀后以空白孔调零,用酶标仪450nm波长测定A值。
5结果判定
5.1试验结果符合下列条件,方为有效:以空白孔调零,阴性对照值小于等于0.10,临界对照A值应在0.15~0.40之间,证明试验成立。5.2结果判定
5.2.1待检样品A值大于等于临界对照A值的平均值,判为阳性;5.2.2待检样品A值小于临界对照A值的平均值,判为阴性。6结巢解释
6.1基础级犬:接种疫苗后,经ELISA检测抗体效价达到阳性值判为合格。6.2SPF级犬,不应进行疫苗接种,对阳性检测结果,选用同一种方法或另一种方法重试。如为阳性则判为阳性。
6.3基础级犬群体免疫抗体合格率:免疫抗体合格率=(被检动物抗体阳性数/被检动物总数)×100%基础级犬群体免疫抗体合格率达到70%以上可判为该犬群免疫合格。2
结果报告
根据判定结果,作出报告。
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实验动物
狂犬病病毒检测方法
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字数7千字
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